Интубация животных

Содержание
  1. Ингаляционная анестезия и интубация кроликов
  2. Препараты
  3. Ингаляционные анестетики
  4. Слепая интубация
  5. Интубация с визуализацией гортани
  6. Назальная интубация
  7. Альтернатива интубации
  8. Анестезия экзотических домашних животных и птиц
  9. Предоперационная подготовка
  10. Общая анестезия
  11. Постоперационная терапия
  12. Заключение
  13. Анестезия в ветцентре доктора Воронцова
  14. Ветеринарный петербург
  15. Начальные мероприятия
  16. Построение лечебной тактики зависит от конкретной клинической ситуации:
  17. Лечение животных в остром периоде ЧМТ
  18. Постановка на ИВЛ
  19. Стабилизация гемодинамики
  20. Устранение гипоксии
  21. Седативная терапия
  22. Нейропротекция
  23. Кормление
  24. Уход
  25. Интубация животных
  26. Показания к интубации
  27. Противопоказания к процедуре
  28. Инструменты, необходимые для интубации
  29. Правила выполнения интубации
  30. Интубация младенцев
  31. Возможные последствия и осложнения

Ингаляционная анестезия и интубация кроликов

Интубация животных

УДК 619:636.92:615.211:616-089.819.3

Inhalation anesthesia and intubation of rabbits

Препаратом выбора для ингаляционной анестезии кроликов является изофлюран. Введение в наркоз осуществляется концентрацией 2-3%, поддержание анестезии 1-2% в 100% кислороде через лицевую маску, ларингеальную или эндотрахеальную трубку.

Isofluran is the anesthetic of choice for rabbits. Induction can be done with a concentration of 2-3%, and anesthesia can be maintained 1-2% with 100% oxygen. Anesthesia can be maintained via face mask, laryngeal mask or ehdotracheal tube.

Препараты

В настоящее время для ингаляционной анестезии применяют изофлюран, галотан, закись азота, севофлуран, обладающие сходными свойствами. Они вызывают сон, но не оказывают анальгезирующего действия, отличаются друг от друга по своей эффективности [1; 3; 16].

Закись азота – газ, оказывающий минимальное воздействие на сердечно-сосудистую и дыхательную системы. У кроликов его способность вызывать анестезию в 2 раза меньше чем у человека, и он преимущественно используется для введения в наркоз.

Закись азота также воздействует на опиатные рецепторы, что используют для поддержки анальгезии.

Имеются негативные последствия применения этого препарата, он может вызывать гипоксию и проникать в другие доступные для газообразных веществ места [11].

Смесь 50/50% оксида азота и кислорода облегчает индукцию в анестезию перед применением других газов. Когда удовлетворительный уровень анестезии достигнут, окись азота удаляют, так как существует риск его проникновения в другие органы, например в слепую кишку. Риск проникновения в органы желудочно-кишечного тракта выше у кроликов со сниженной моторикой [16].

Галотан, фторотан (Halotane) – много лет галотан является препаратом выбора для газового наркоза кроликов, хотя в настоящее время чаще используют изофлюран. Галотан негорюч, вызывает быстрое введение в наркоз, быстрое восстановление и хорошую мускульную релаксацию.

Он расширяет сосуды и вызывает падение давления. Галотан может повышать чувствительность миокарда к катехоламинам в случае продолжительной анестезии [3]. Применяют с использованием нереверсивного дыхательного контура: вводный наркоз 2-4%, поддержание 0,25-2,0% [11].

Ингаляционные анестетики

Изофлюран (Isoflurane) – ингаляционный препарат для общей анестезии с характерным затхлым эфирным запахом.

У кроликов он быстро выделяется через респираторную систему и только около 0,2% метаболизируется в печени [10].

Это безопасный анестетик для животных с нарушенной функцией печени и почек, имеет некоторые преимущества перед галотаном и рекомендован для анестезии кроликов.

Предположение, что изофлюран может обладать защитным эффектом на мозг, было подтверждено исследованиями, в которых изофлюран сохранял энергетическое состояние мозга во время ишемии.

На модели кроликов с острой гипотензией, вызванной кровопотерей, было показано, что накопление лактата в мозге существенно меньше, а содержание АТФ и фосфокреатинина достоверно выше на фоне 3% изофлюрана (2 МАС), чем на фоне 70% закиси азота [11].

Он не угнетает сократимость миокарда так сильно как галотан. Установлено, что минимальная альвеолярная концентрация (MAC) % у кроликов составляет 2,05%  в отличие от 1,34% у птиц и 1,68% у кошек.

MAC – это концентрация анестетика в альвеолах, которая предотвращает сокращение мышц в ответ на болевое раздражение у  50% особей [10]. Введение в анестезию осуществляется концентрацией 2–3% и поддерживается 0,25-2%.

Проблемой его использования является задержка дыхания в ответ на запах газа у слишком легко анестезированных кроликов.

В настоящее время начинают применять и другие ингаляционные анестетики. Allweiler S. et al. (2010) успешно испытали сочетание пропофола внутривенно в дозе 16+/-5 мг/кг для индукции в анестезию с севофлюраном 4,0+/-0,5% в кислороде для овариогистеректомии на 34 новозеландских белых кроликах [2].

Эндотрахеальная интубация затруднена у кроликов из-за трудности визуализации гортани. Рот кроликов широко не открывается, и широкое основание языка занимает большую часть носоглотки, закрывая гортань. Невозможно увидеть гортань без ларингоскопа, аурископа или эндоскопа [13].

Даже с перечисленным оборудованием, может быть очень трудно увидеть гортань у кроликов мелких пород. Голосовая щель или вход в глотку обычно очень узкая и может пропустить только маленькую эндотрахеальную трубку. Обычно для интубации кролика массой 2,5 кг используют трубку диаметром 2,5 мм.

Осторожность необходима для предотвращения ятрогенного повреждения гортани и глотки, ларингоспазма и респираторного дистресса [7].

Слепая интубация

Возможно проведение интубации кролика без визуализации гортани. После введения в анестезию, кролика помещают в лежачее положение на спине,  шею вытягивают так, чтобы она составляла прямую линию от ротового отверстия до гортани. Использование роторасширителя не нужно, и даже противопоказано, так как он стимулирует жевательные движения.

Лингокаина гидрохлорид (Intubeze) распыляют как можно глубже в ротовую полость, двигая головой так, чтобы жидкость протекла через язык в гортань. Через одну-две минуты, когда местная анестезия подействует, трубку проводят через щель к входу в гортань.

При правильном расположении конца эндотрахеальной трубки, если приложить к ее просвету ухо, слышны дыхательные звуки. Когда дыхательные звуки слышны, трубку осторожно продвигают вперед при каждом вдохе.

Можно использовать водорастворимый любрикант с лидокаином луан (Luan), содержащий 1% лидокаина гидрохлорид, которым непосредственно перед началом исследования тщательно, одним слоем, смазывают поверхность инструмента, который будет введен.

Необходимо наблюдать за дыхательными движениями кролика все время продвижения трубки. Дыхательные звуки становятся громче по мере продвижения трубки к гортани, они самые громкие, когда трубка проникает в гортань. Если дыхательные звуки уменьшаются при продвижении трубки в глубину, значит, она проникла в пищевод, в этом случае чувствуется сопротивление.

Если трубка проникла через ую щель в гортань, кролик обычно кашляет и дыхательные звуки становятся слышны через трубку. Образование конденсата на стенках эндотрахеальной трубки подтверждает правильность позиции. Если трубка была введена в пищевод, ее можно пропальпировать рядом с трахеей.

Если первая попытка закончилась безрезультатно, следующую процедуру следует проводить, используя трубку меньшего диаметра.

Интубация с визуализацией гортани

У крупных кроликов гортань можно увидеть с помощью эндоскопа, ларингоскопа или отоскопа. Применяют отоскоп или ларингоскоп (клинок размера 0-1), используемые в педиатрии. Для интубации кролика помещают в одну из двух позиций: на спину или на грудь с вытянутой шеей.

Мягкое небо может быть необходимо отодвинуть от надгортанника концом эндотрахеальной трубки, так чтобы стал виден вход в гортань [17]. Для облегчения интубации можно использовать проводник.

Мочевой катетер маленького размера можно ввести в эндотрахеальную трубку перед введением ее в гортань и использовать его как проводник [7]. Другой способ – сначала ввести тонкий 1,9 мм полугибкий эндоскоп, позволяющий увидеть гортань и ввести в нее эндотрахеальную трубку.

Для интубации кроликов можно использовать эндотрахеальные трубки как с манжетой, так и без нее [14].

Многие исследователи считают, что кролики предрасположены к развитию угрожающих жизни осложнений после эндотрахеальной интубации. В исследовании Grint NJ. et al.

(2006), у трех кроликов, которым проводилась интубация трубкой из поливинилхлорида, длиной 12 см и диаметром 2,5 мм, через 17-21 день после интубации появилось диспное, два кролика погибли, несмотря на лечение, третьего эутаназировали.

При патологоанатомическом исследовании во всех трех случаях обнаружен очаговый  трахеит, причиной которого было механическое повреждение слизистой и химический ожог остатками дезинфицирующих средств [8].

В другом исследовании, у 6 из 15 кроликов после интубации отмечали цианоз и одышку, 2 из них погибли из-за обструкции дыхательных путей некротизированными участками слизистой трахеи [12]. Профилактировать возможные осложнения, связанные с интубацией, можно коротким курсом метилпреднизолона [5] или дексаметазона [6].

Назальная интубация

Назальная интубация является альтернативой эндотрахеальной. Для этого можно использовать тонкую мягкую назогастральную трубку диаметром 1,0-1,5. Этот способ позволяет создавать высокое положительное давление и успешно вводить наркозную смесь в носоглотку [15].

Назальная интубация используется у маленьких кроликов, у которых затруднена интубация через гортань. Иногда невозможно ввести назальную трубку, если корни резцов повреждают носовой ход.

Назальная интубация сопровождается риском проникновения патогенной микрофлоры, в первую очередь Pasteurella multocida, из носовой полости в трахею и затем в легкие.

Альтернатива интубации

Альтернативой интубации является использование ларингеальной маски, изучение такого вида поддержания анестезии на 50 кроликах показало его эффективность и относительную простоту применения, так как такая маска может быть легко и быстро установлена, и правильность ее установки легко проверить [9]. В другом исследовании, Smith JC. et al.

(2004), сравнивали эффективность и простоту применения эндотрахеальной трубки с манжетой, без манжеты и ларингеальной маски.

Исследователи сделали вывод, что поддержание анестезии происходит одинаково эффективно во всех случаях, а использование ларингеальной маски технически проще, в зоне дыхания хирурга изофлюран не обнаруживался ни при каком способе интубации [14].

Bateman L et al. (2005) считают, что использование ларингеальной маски предпочтительнее, чем лицевой, так как в этом случае обеспечивается лучшая проходимость дыхательных путей при сохранении спонтанного дыхания, в случае необходимости, возможна принудительная вентиляция легких, возможным неблагоприятным последствием которой является тимпания желудка [4].

Выведение из организма ингаляционных анестетиков происходит практически без участия печени и почек, она является более управляемой, чем анестезия с использованием инъекционных препаратов и, следовательно, более безопасной, особенно для пациентов группы риска.

Мелентьев Олег Николаевич, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры болезней птиц, рыб, пчел и пушных зверей ФБГОУ ВПО «Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины»,  ветеринарный врач центра ветеринарной медицины “Ветус”.

Литература

1Пламб, Дональд К. Фармакологические препараты в ветеринарной медицине // М., 2002.- 856 с.
2Allweiler S, Leach MC, Flecknell PA. The use of propofol and sevoflurane for surgical anaesthesia in New Zealand White rabbits // Lab Anim. 2010 Apr;44(2):113-7. Epub 2010 Jan 13
3Atherley RJ, Antognini JF. A rapid and simple method for determination of halothane, isoflurane and sevoflurane in blood using gas chromatography // Biomed Chromatogr. 2004 Nov;18(9):714-8
4Bateman L, Ludders JW, Gleed RD, Erb HN. Comparison between facemask and laryngeal mask airway in rabbits during isoflurane anesthesia //  Vet Anaesth Analg. 2005 Sep;32(5):280-8
5Fidan H, Sahin O, Fidan F, Ela Y, Songur A, Ya?murca M. Oedema risk of endotracheal intubation in rabbits with cessation of steroid therapy // Tuberk Toraks. 2008;56(4):414-21
6Funda A, Guniz M, Sibel E, Huseyin O. The effects of intratracheal dexamethasone on acute lung injury in rabbits-experimental study // Middle East J Anesthesiol. 2005 Feb;18(1):161-71
7Gilroy, A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents // J Am Vet Med Assoc., 1981; 183, 1295
8Grint NJ, Sayers IR, Cecchi R, Harley R, Day MJ. Postanaesthetic tracheal strictures in three rabbits // Lab Anim. 2006 Jul;40(3):301-8
9Kazakos GM, Anagnostou T, Savvas I, Raptopoulos D, Psalla D, Kazakou IM. Use of the laryngeal mask airway in rabbits: placement and efficacy // Lab Anim (NY). 2007 Apr;36(4):29-34
10Marano, G., Formigari, R., Grigioni, M., Vergari, A. (1997). Effects of isoflurane versus halothane on myocardial contractility in rabbits: assessment with transthoracic two-dimensional echocardiography // Lab Anim., 1997; 31, 144–150
11Newberg L.A., Michenfelder J.D. Cerebral protection by isoflurane during hypoxemia or ischemia // Anesthesiology. 1983; V. 59 p. 29-35
12Phaneuf LR, Barker S, Groleau MA, Turner PV. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits //  J Am Assoc Lab Anim Sci. 2006 Nov;45(6):67-72
13Price H. Intubating rabbits // Vet Rec. 2007 May 26;160(21):744
14Smith JC, Robertson LD, Auhll A, March TJ, Derring C, Bolon B. Endotracheal tubes versus laryngeal mask airways in rabbit inhalation anesthesia: ease of use and waste gas emissions // Contemp Top Lab Anim Sci. 2004 Jul;43(4):22-5
15Stephens Devalle JM. Successful management of rabbit anesthesia through the use of nasotracheal intubation // J Am Assoc Lab Anim Sci. 2009 Mar;48(2):166-70
16Wixson, S.K. Anesthesia and analgesia. In The Biology of the Laboratory Rabbit, Academic Press, 2nd edn. 1994 (P.J. Manning and D.H. Ringler, eds). pp 87–109
17Worthley SG, Roque M, Helft G et al: Rapid oral endotracheal intubation with a ?breoptic scope in rabbits: a simple and reliable technique //  Lab Anim 34, 2000: 199-201

Дмитрий Тамошкин – главный ветврач ветклиники «Ветус»

2014-10-04

Источник: https://www.vetusklinika.ru/article/rabbit/anaesthesia/inhalation-anesthesia-intubation-rabbits/

Анестезия экзотических домашних животных и птиц

Интубация животных

Наркоз у экзотических млекопитающих животных (хорьки, хомяки, мыши, крысы, кролики, шиншиллы, декоративные свиньи, медведи, кошачьи), рептилий (змеи, ящерицы, черепахи), птиц и амфибий используется для проведения многих диагностических и хирургических процедур.

Проведение анестезии у таких пациентов имеет свои особенности и предполагает наличие специального опыта у врача-анестезиолога.

Все общие принципы анестезии и предоперационной подготовки кошек и собак справедливы и для экзотических животных. Обязательно проведение общего клинического обследования, оценка анестезиологического риска, дополнительное обследование функций органов и систем.

Особую сложность в проведении общей анестезии представляют собой рептилии, птицы, амфибии. Принципиальным у этих животных является разница в скорости обмена веществ и анатомо-физиологические особенности, что определяет различия в предоперационной подготовке, выборе препаратов для анестезии и послеоперационном наблюдении.

Предоперационная подготовка

Предоперационная подготовка предполагает соблюдение голодной диеты перед проведением анестезии. Это необходимо для профилактики регургитации (отрыгивания пищи) и дальнейшей аспирации содержимого желудка (то есть проникновения его в дыхательные пути).

У грызунов и птиц период голодной диеты должен составлять не более трех часов ввиду их быстрого обмена веществ. У рептилий опасность аспирации маловероятна из-за особенностей строения ой щели, но тем не менее некоторые плановые исследования проводятся с соблюдением голодной диеты в течение 3 суток.

В некоторых случаях животным требуется предварительная инфузионная терапия, то есть капельницы, включающие в себя растворы электролитов и растворы декстрозы, активное согревание.

Общая анестезия

У экзотических животных хорошо зарекомендовали себя инъекционные препараты, используемые у кошек и собак, а именно Пропофол, Золетил и его аналоги.

Пропофол хорошо подходит для индукции наркоза у игуан, при внутривенном введении обеспечивает кратковременную анестезию, достаточную для проведения небольших манипуляций и интубации.

Однако следует помнить, что Пропофол не обладает обезболивающим эффектом.

При проведении длительных процедур имеет смысл поддерживать анестезию с помощью ингаляционных анестетиков, которые поступают в легкие посредствам маски или интубационной трубки.

У змей и варанов ая щель находится близко в ротовой полости и интубация бывает возможна даже у бодрствующих животных. У большинства ящериц и черепах интубация обычно требует предварительной седации с использованием Золетила.

Основным газовым анестетиком является Изофлюран, который обеспечивает быстрое введение в анестезию и более быстрое восстановление по сравнению с другими анестетиками. Объем подачи рассчитывается в МАКах.

Минимальная альвеолярная концентрация (МАК) — это концентрация анестетика в альвеолах, которая определяется процентным соотношением газов и обеспечивает наркозный сон.

Минимальная альвеолярная концентрация изофлюрана для анестезии рептилий составляет 1,5 — 2,1%, у кроликов — 2,05% и 1,34% у птиц.

Важно контролировать необходимую концентрацию в дыхательном контуре, чтобы избежать передозировки анестетика и, как следствие, остановки дыхания и других опасных осложнений анестезии.

В наших условиях есть надежный способ мониторинга концентрации газовой смеси с помощью специального монитора (фото 1, 2), который при помощи магистрали соединяется с контуром и отображает на дисплее изменения концентрации газообразного анестетика.

У рептилий из-за отсутствия диафрагмы под общей анестезией может возникать остановка дыхания, в связи с чем необходимо проведение искусственной вентиляции легких для поддержания постоянной глубины анестезии.

Стимулом для восстановления дыхания у рептилий является снижение концентрации кислорода в контуре, тогда как у млекопитающих – увеличение концентрации углекислого газа.

Таким образом, когда процедура заканчивается, прекращается подача кислорода и продолжается вентиляция с использованием только комнатного воздуха.

Постоперационная терапия

В послеоперационном периоде основной задачей является поддержание температуры пациента и контроль гипотермии. Кроме того требуется восстановление водно-электролитного баланса, то есть введение жидкостей, так как обезвоживание пациента снижает скорость восстановления и выведения анестетика из организма.

Долгое время исследование электрокардиограммы (ЭКГ) широко использовалось и обеспечивало надежную индикацию частоты пульса у животного. Однако использование ЭКГ не изучено у всех видов животных и неэффективно у мелких животных и рептилий по причине либо высокой частоты сердечных сокращений, либо небольшого электрического потенциала.

Ультразвуковое допплеровское исследование используется для оценки кровотока и давления в сосудах за счет отражения ультразвуковых волн от красных кровяных клеток – эритроцитов. Эта методика считается очень точной, но не в состоянии отслеживать многие физиологические изменения в состоянии пациента, поэтому не находит широкого распространения.

Обыкновенный или пищеводный стетоскоп является хорошим средством мониторинга у всех животных, кроме рептилий.

Хорошо зарекомендовала себя в качестве метода мониторинга анестезии пульсоксиметрия. Это неинвазивный метод определения степени насыщения крови кислородом. В основе метода лежит спектрофотометрический способ оценки количества гемоглобина в крови.

Пульсоксиметр имеет периферический датчик, в котором находится источник света двух длин волн — «красный» и «инфракрасный». Степень поглощения зависит от того, насколько гемоглобин крови насыщен кислородом (каждая молекула гемоглобина способна присоединить максимум 4 молекулы кислорода).

Фотодетектором регистрируются изменения цвета крови в зависимости от этого показателя. Усреднённое наполнение отображается монитором пульсоксиметра.

В любом случае ни один аппаратный способ мониторинга не заменит постоянного контроля анестезиолога активности рефлексов, наблюдения за дыханием и сердечной деятельностью, термометрией.

В отношении рептилий актуально также следить за температурой воздуха в помещении, так как он влияет на температуру тела пациента.

У разных видов диапазон возможных температур может варьироваться, но во всех случаях температурный порог не должен опускаться ниже 24 градусов.

Заключение

Проведение анестезии у экзотических животных является специфичной и необходимой процедурой, имеющей свои особенности ввиду физиологических различий у пациентов. Объективный мониторинг снижает риски осложнений.

Анестезия в ветцентре доктора Воронцова

Применение анестезии может понадобиться как для хирургического вмешательства, так и для проведения некоторых диагностических процедур. Проконсультируйтесь с врачем-анестезиологом в нашем центре.

Мы находимся в Москве, недалеко от пересечения МКАД и Каширского шоссе. Точный адрес: Совхоз им. Ленина, дом 3а (смотрите схему проезда), метро Домодедовская, Зябликово, Орехово, Красногвардейская.

+7(495) 740-48-59
+7(936) 001-03-04. 

Источник: https://vchot.ru/poleznye-stati/anesteziologija/anesteziya-ekzoticheskikh-zhivotnykh/

Ветеринарный петербург

Интубация животных

Автор: Грачева Галина, врач отделения реанимации интенсивной терапии Ветеринарной клиники неврологии, травматологии и интенсивной терапии, г. Санкт-Петербург. Летальность при тяжелой черепно-мозговой травме остается очень высокой – 60-80%.

Разделяют первичные и вторичные повреждения головного мозга.

К первичным относят повреждения, которые являются прямым следствием травмы: переломы черепа, разрывы кровеносных сосудов, а также разрыв или раздавливание паренхимы головного мозга. Вторичные повреждения развиваются вследствие анатомических и физиологических изменений: отека мозга, гематом, повышения внутричерепного давления, ишемии.

Эти изменения происходят в течение нескольких часов или дней после получения травмы, и их коррекция является основной задачей врача ОРИТ.

Начальные мероприятия

• при нарушении функций жизненно важных органов обследованию должны предшествовать неотложные мероприятия – интубация трахеи, проведение ИВЛ, нормализация АД; • определение глубины нарушения сознания (до консультации невролога), для чего чаще всего используют шкалу комы Глазго, адаптированную для животных: Таблица 1 ВАЖНО! Полное неврологическое обследование в зависимости от тяжести травмы и первичного осмотра необходимо повторно проводить через 30-60 минут, затем через 3 часа, а затем ежесуточно. При изменениях в состоянии нервной системы следует изменять курс терапии. • МРТ, КТ (если такая возможность имеется); • рентгенография грудной клетки, черепа в двух проекциях, шейного отдела позвоночника; ВАЖНО! Каждый десятый пациент с тяжелой ЧМТ одновременно имеет и повреждение шейного отдела позвоночника. Пока повреждение позвоночника не исключено, животное должно вестись как имеющее травму позвоночника. • лабораторные исследования: общий анализ крови, глюкоза крови, газы крови и электролиты, креатинин и мочевина крови, общий анализ мочи;

• мониторинг: общеклинический – АД, ЧСС, ЧД, ЭКГ, сатурация крови; нейромониторинг – ВЧД, ЭЭГ, чресчерепная доплеровская эхография.

Построение лечебной тактики зависит от конкретной клинической ситуации:

1. вида повреждения: эпидуральная гематома, субдуральная гематома, ушиб головного мозга, вдавленный перелом костей черепа, сочетание указанных состояний; 2. объема повреждений; 3. степени угнетения сознания (ШКГ); 4. результатов мониторинга.

Лечение животных в остром периоде ЧМТ

Первоочередные мероприятия должны быть закончены в течение 2 часов с момента поступления животного в ОРИТ.

При наличии у животного аспирационного синдрома и нарушенного сознания (кома) необходимо провести немедленную интубацию трахеи и санацию трахеобронхиального дерева. Предпочтительна оротрахеальная интубация.

Экстренная лечебно-диагностическая бронхоскопия показана при наличии в аспирируемой жидкости твердых частиц пищи, прогрессировании острой дыхательной недостаточности.

Постановка на ИВЛ

Показаниями к ИВЛ являются кома, гипер- и гиповентиляционный синдром, нарушение ритма дыхания, признаки нарастания внутричерепной гипертензии, сопутствующие повреждения грудной клетки, травматический шок 2-3 степени, признаки декомпенсированной дыхательной недостаточности любого генеза. Положительное давление в конце вдоха (ПДКВ) 2-4 см вод. ст.

по возможности должно быть применено у всех животных с ТЧМТ, поскольку оно позволяет уменьшить образование ателектазов и не увеличивает ВЧД. Синхронизация животного с аппаратом ИВЛ при помощи седатиков или недеполяризующих мышечных релаксантов обязательна.

ВАЖНО! Если нет возможности проводить ИВЛ, стоит отказаться от введения животному наркотических анальгетиков.

Стабилизация гемодинамики

Необходимо всегда исходить из того, что при травматическом повреждении мозга развивается церебральная ишемия, поэтому следует своевременно восстановить объем крови для улучшения ее притока к головному мозгу. Чрезвычайно важно максимально увеличить поступление кислорода и свести до минимума опасность избыточного поступления жидкости.

С этой целью лучше всего контролировать ЦВД и АД, кислотно-основной баланс крови, температуру тела, ЧСС и ритм сердечных сокращений (ЭКГ), частоту и ритм дыхания, диурез, а также использовать метод оксигемометрии. Необходимо провести мероприятия по восстановлению нормоволемии.

Рутинное применение диуретиков недопустимо, так как это может неблагоприятно повлиять на исход болезни. Лучшим методом, признанным во многих странах мира, является сочетание инфузий коллоидов и гиперосмолярных растворов. Этот метод называется методом малообъемной реанимации.

Например, инфузия 7,5% натрия хлорида в сочетании с коллоидом (6%) быстро восстанавливает ОЦК и не приводит к повышению ВЧД. Если нет возможности применить натрия хлорид, либо имеются электролитные нарушения (гипернатриемия, гиперхлоремия), необходимо воспользоваться другим гиперосмолярным раствором – маннитом 15%. ВАЖНО! Маннит активно выводит К из организма.

До отмены этого раствора необходим ежедневный контроль этого электролита. Назначается же маннит в дозе 1,5 г/кг каждые 6 часов в первые сутки со снижением дозы до 0,5 г/кг в последующие дни.

Устранение гипоксии

Оптимальный уровень PaO2 80-90 мм рт. ст. Дополнительная подача кислорода животным с ЧМТ не повредит, но необходимо помнить о том, что уровень кислорода в крови также напрямую зависит от уровня эритроцитов. Анемия должна быть устранена. Также важно помнить о пользе нормовентиляции и стараться ее поддерживать.

ВАЖНО! При низком АД, в условиях устраненной гиповолемии, при отсутствии пневмоторакса и гипоксии не следует в качестве вазопрессора использовать допамин, так как он в большей степени увеличивает отек мозга.

Если АД повышено, проведение гипотензивной терапии может быть отложено, поскольку чаще всего АД нормализуется с началом седативной терапии.

Также необходимо придать животному положение с приподнятым головным концом не менее 10 и не более 30 градусов, так как при таком положении происходит максимальное гравитационное снижение ВЧД без значительного воздействия на давление церебральной перфузии или церебрального кровотока.

Седативная терапия

Адекватная седативная терапия позволяет уменьшить метаболические потребности мозга, снизить вероятность и прогрессирование внутричерепной гипертензии, облегчить синхронизацию животного с аппаратом ИВЛ. В течение острого периода седативная терапия необходима.

К критериям адекватности ее проведения относят: отсутствие двигательного возбуждения, отсутствие тахикардии, сохранение умеренной спонтанной мышечной активности (исключение – животные с ВЧГ), кашлевой рефлекс, реакции на болевые раздражители. При глубокой коме и хорошей синхронизации с аппаратом ИВЛ седатики либо не используются, либо применяются в минимальных дозировках.

У животных с ВЧГ, напротив, седация должна быть более глубокой. Если животное на спонтанном дыхании и степень травматизации невелика, седативная терапия заключается в поддержании сонливого состояния (без применения наркотических анальгетиков). Непрерывная инфузия обеспечивает большую гемодинамическую стабильность. Используются пропофол или тиопентал натрия.

При нестабильной гемодинамике лучше использовать феназепам также в виде непрерывной инфузии. Коррекция внутричерепной гипертензии (ВЧГ) К сожалению, адекватно оценить наличие и степень ВЧГ не представляется возможным, поскольку не существует методов измерения внутричерепного давления у животных.

Косвенно судить о ВЧГ мы можем по таким симптомам, как нарушение поведения (гиперактивность), нарушение зрения, изменение сосудистого рисунка глазного дна, изменение в ритме сердечных сокращений (брадикардия), расширение желудочков на нейросонограмме и т.д. Коррекция ВЧГ заключается в основном в ее профилактике.

Профилактика раннего судорожного синдрома

Препаратом выбора является фенобарбитал. Профилактика судорожного синдрома ощутимо влияет на дозы седативных средств, значительно уменьшая их и снижая риск возникновения нарушений со стороны сердечно-сосудистой и дыхательной систем. Также судороги являются независимым фактором риска смерти животного и должны быть устранены.

Нейропротекция

С учетом того, что при ЧМТ активизируется несколько каскадов реакций, вызывающих гибель клеток, эффективная нейропротекция требует сложной комбинации препаратов, действующих на различные звенья цепи патофизиологических событий по мере эволюции повреждения мозга.

Наиболее эффективными препаратами являются эритропоэтин, прогестерон и циклоспорин. Было доказано, что их применение в течение острого периода травмы значительно улучшает исход болезни. ВАЖНО! Терапевтическое «окно» для этих препаратов ограничено 6-12 часами после получения травмы.

Их применение вне этого диапазона значительно снижает их эффективность.

Кормление

На вторые сутки после поступления животного с ЧМТ в ОРИТ необходимо начать энтеральное (зондовое) питание. Улучшение прогноза доказано в 3 рандомизированно исследованных группах животных. Калорийность питательных смесей должна повышаться, начинать стоит с гипокалорийного питания, постепенно доводя его до обычных потребностей животного.

Энтеральное питание заменяют на парентеральное в случае невозможности использования желудочно-кишечного тракта. ВАЖНО! Уровень глюкозы в крови может повышаться при ЧМТ. Гипергликемия усиливает анаэробный метаболизм и может привести к церебральному ацидозу.

Контроль должен осуществляться каждые 4-6 часов, и в зависимости от результатов проводят коррекцию скорости введения питательных смесей, а при необходимости вводят инсулин.

Уход

Для предотвращения пролежней и ателектаза легких животное необходимо переворачивать каждые 4 часа. Для предотвращения контрактуры мышц желательно проводить физиотерапию. ВАЖНО! Пациенты с множественными повреждениями опорно-двигательного аппарата или переломами черепа испытывают боль, поэтому необходимо обеспечить адекватную анальгезию. Литература:

  1. Simon R.

    Platt Small animal neurology, 2009.

  2. Bergyii T. Neurology pathology. Intensive care, 2012.
  3. Natasha J. Olby Neuroprotection, 2010.
  4. Fabber P. Progesterone, brain-derived neurotrophic factor and neuroprotection, 2012.
  5. Braund K. G., Vallat J. M. Veterinary pathology, 2007.
  6. Kirk К., Bonagoura D.

    Modern course in veterinary medicine

Источник: https://www.spbvet.info/zhurnaly/5-2013/konservativnoe-lechenie-sobak-i-koshek-s-cherepno-mozgovoy-travmoy/

Интубация животных

Интубация животных

статьи:

Интубация на сегодняшний день является основным методом обеспечения проходимости дыхательных путей во время операций под общим наркозом и реанимации. Суть данной процедуры заключается во введении специальной трубки в глотку пациенту. Несмотря на большое количество внешних надгортанных инструментов, только интубация до сих пор является самым надежным и проверенным методом.

Показания к интубации

Интубация трахеи – это процедура, которая позволяет обеспечить пациенту стабильную проходимость дыхательных путей. Навыками проведения подобной операции должны обладать все медицинские бригады, так как ее выполнение зачастую требуется еще до госпитализации.

Строение и заболевания икроножной мышцы

Проведение интубации трахеи необходимо во время реанимационных мероприятий, обструкции дыхательных путей, эндотрахеального наркоза. При этом в медицинской практике выделяют ряд основных показаний к проведению подобной процедуры. Принято делить их на абсолютные и относительные. Решение принимает лечащий врач или бригада скорой помощи.

Показания к интубации (абсолютные):

  • Травма черепно-мозговая.
  • Синдром аспирации.
  • Легочно-сердечная реанимация.
  • Глубокая кома.
  • Непроходимость воздухоносных путей.
  • «Амоксициллин» и алкоголь: совместимы или нет?

    Реклама

    Канал ДНЕВНИК ПРОГРАММИСТА

    Жизнь программиста и интересные обзоры всего. , чтобы не пропустить новые видео.

    Относительные показания к интубации:

  • Шоковое состояние.
  • Отек легких.
  • Термоингаляционные травмы.
  • Воспаление легких.
  • Легочная недостаточность.
  • Решение об интубации трахеи принимается врачом индивидуально, основываясь на состоянии пациента и причинах возникновения его неотложного состояния.

    Противопоказания к процедуре

    Прежде чем выполнять непростую манипуляцию, врач должен убедиться, что у пациента отсутствуют противопоказания к интубации трахеи.

    Причины, по которым нельзя проводить процедуру:

  • Отек гортани.
  • Отек языка.
  • Отек глотки.
  • Травма трахеи.
  • Изменения в строении органов шеи или черепа, которые носят патологический или травматический характер.
  • Если интубация проводится в плановом порядке, то есть к операции пациента готовят заранее, то анестезиолог предварительно осматривает больного и изучает анамнез его болезни. Только убедившись в том, что процедура не вызовет осложнений, врач принимает решение о ее проведении.

    Инструменты, необходимые для интубации

    Для того чтобы процедура прошла успешно, медицинский персонал должен обладать определенными навыками и иметь инструменты (набор для интубации трахеи). Оборудование вводится в верхние дыхательные пути, техника данных действий будет рассмотрена ниже.

    Набор для интубации трахеи должен включать в себя:

  • Ларингоскоп. Медицинский инструмент, который позволяет улучшить визуализацию гортани во время процедуры. Специалисты рекомендуют использовать прибор с изогнутым наконечником, что только увеличивает обзор.
  • Троакар. Специальный инструмент (хирургический), с помощью которого обеспечивается проникновение в полости организма.
  • Хирургический зажим. Представляет собой металлические ножницы. Используется для очищения ротовой полости от вязкого секрета.
  • Вентиляционный мешок. Выглядит как резиновая груша, которая соединяется с трубкой. С помощью данного приспособления производится механическая вентиляция легких.
  • Эндотрахеальные трубки. Термопластичные тонкие трубки, которые вводятся в гортань. После введения обладают свойством увеличиваться в размере, что позволяет создать необходимые для процедуры условия.
  • Катетер и аспиратор. Это инструменты санации, которые используются для очищения трахеи от секрета и других жидких скоплений.
  • Медицинская практика показывает, что в экстренных ситуациях, в период до госпитализации сложно добиться оптимальных условий для проведения интубации трахеи. В такие моменты важно четко знать основные правила выполнения процедуры.

    Правила выполнения интубации

    Интубация может проводиться двумя основными методами:

  • Интубация через рот.
  • Назотрахеальный способ.
  • Первый метод считается самым распространенным, так как позволяет получить больше контроля над процедурой. Важно помнить, что пациент должен быть максимально расслаблен. При общем наркозе это достигается после проведения анестезии, в экстренных ситуациях используют препараты из разряда релаксантов.

    Положение тела больного должно быть горизонтальным. Под шею подкладывают валик, что позволяет добиться ее максимального выравнивания.

    Алгоритм интубации трахеи состоит в следующем:

  • Необходимо добиться максимального расслабления пациента, ввести его в наркоз.
  • Проводится искусственная вентиляция легких с использованием кислородной маски (около 2-3 минут).
  • Реаниматолог открывает пациенту рот и вводит туда ларингоскоп.
  • Инструмент прижимается к корню языка, что обеспечивает лучшую доступность гортани.
  • Врач вводит в глотку термопластичную трубку.
  • Ошибка в технике интубации трахеи может привески в гипоксии пациента или к другим осложнениям. В зависимости от ситуации врач повторяет попытку, либо отказывает от подобного способа вентиляции легких.

    Интубация младенцев

    Интубация новорожденных детей – процедура, достаточно распространенная в медицинской практике. В некоторых случаях это лучший способ наладить стабильную работу легких. Однако процедуру необходимо проводить с особой осторожностью.

    В случае с младенцами интубация проводится не через рот, а через носовой проход. Прежде чем ввести трубку, ее поверхность смазывают специальным кремом.

    Интубированный ребенок должен находиться под бдительным наблюдением медицинского персонала до тех пор, пока не наладится его собственная дыхательная функция. После этого трубки аккуратно извлекаются.

    Возможные последствия и осложнения

    Неблагоприятные последствия и осложнения возникают преимущественно по причине неверной техники проведения процедуры. Такое положение дел может быть следствием недостаточной компетентности медицинского персонала или же неблагоприятных условий проведения интубации.

    Среди возможных последствий выделяют следующие:

  • Повреждения травматического характера (травмирование нижней челюсти, поломка зубов, повреждение слизистой, травма гортани).
  • Осложнения технического характера (смещение трубки, непроходимость трубки, попадание трубки в правый бронх).
  • Последствия интубации под общим наркозом становятся заметны позже. К подобным осложнениям относят отек ых связок, ларингит, гранулему ых связок.
  • Современная медицинская статистика говорит о том, что получить осложнения от интубации трахеи сегодня сложно. Медицинский персонал обладает необходимыми знаниями, навыками, имеет в наличии нужные инструменты.

    Источник

    Источник: 1Ku.ru

    Источник: https://naturalpeople.ru/intubacija-zhivotnyh/

    Ваш лекарь
    Добавить комментарий

    ;-) :| :x :twisted: :smile: :shock: :sad: :roll: :razz: :oops: :o :mrgreen: :lol: :idea: :grin: :evil: :cry: :cool: :arrow: :???: :?: :!: